【產(chǎn)品概述】
基恩科(Gene carer)生物慢病毒包裝試劑盒(Lentiviral Packing Kit)由優(yōu)化的慢病毒包裝輔助質(zhì)?;旌衔铮↙entiviral Mix),高效轉(zhuǎn)染試劑、慢病毒濃縮液,病毒感染增強(qiáng)劑四部分組成。適用于基因過表達(dá)或基因干擾的慢病毒的包裝,以及后續(xù)穩(wěn)轉(zhuǎn)細(xì)胞株的構(gòu)建,或直接用于動物體內(nèi)注射。
【主要組成】
組分 | 貨號 | 產(chǎn)品名稱 | 10次 | 20次 | 保存 |
組分1 | GC020100546 | 慢病毒包裝輔助質(zhì)粒Mix | 300ul | 600uL | -20°C |
組分2 | GC121001576 | 高效轉(zhuǎn)染試劑 | 300ul | 600ul | -20°C |
組分3 | GC121001699 | 慢病毒梯度濃縮液(5×) | 50mL | 100mL | 4°C |
組分4 | GC231000538 | 慢病毒感染增強(qiáng)劑(100×) | 500ul | 1mL | 4°C |
組分5 | GC020400115 | CoGFP陽性對照質(zhì)粒(Amp+) | 20ug | 40uL | -20°C |
組分6 | GC230101700 | 輔助收毒液A | 200uL | 400uL | 4°C |
組分7 | GC230101701 | 輔助收毒液B | 200uL | 400uL | 4°C |
【自備試劑】:無菌水,PBS緩沖液,3%FBS+DMEM培養(yǎng)基,完全培養(yǎng)基:10%FBS+DMEM培養(yǎng)基
【收毒液配制】:收毒液:10%FBS+DMEM培養(yǎng)基+1%輔助收毒液A+1%輔助收毒液B(現(xiàn)配現(xiàn)用)
【運 輸】:冰袋運輸
【實驗前準(zhǔn)備及重要注意事項】
1.慢病毒表達(dá)載體:基恩科慢病毒包裝試劑盒可以包裝Plenti-,Plvx-,PCDH-等系列慢病毒表達(dá)載體,psiH1-,plk0.1-,Lenti-CRISPR等干擾或敲除表達(dá)載體。
2.表達(dá)載體質(zhì)量:無內(nèi)毒素提取慢病毒表達(dá)載體DNA,質(zhì)粒DNA溶于無菌的TE或ddH2O中,以紫外光吸收法測定其濃度及純度,保證所提質(zhì)粒DNA 的A260/A280在1.8~2.0之間,濃度≥500ng/uL,質(zhì)粒質(zhì)量和濃度會影響慢病毒滴度。
3.細(xì)胞狀態(tài):良好的細(xì)胞狀態(tài)對病毒的包裝至關(guān)重要,避免細(xì)胞培養(yǎng)基有細(xì)菌、真菌或支原體的污染,盡量使用傳代次數(shù)較少的細(xì)胞,如果細(xì)胞是剛復(fù)蘇的話,傳兩代之后再進(jìn)行病毒包裝。
4.病毒包裝轉(zhuǎn)染前293T細(xì)胞匯合度約60%-70%最佳,細(xì)胞匯合度太低影響轉(zhuǎn)染后細(xì)胞狀態(tài),匯合度太高影響轉(zhuǎn)染效率。
5.包病毒后16-18h換液,否則轉(zhuǎn)染試劑沉淀會降低病毒滴度。
6.滴度檢測用熒光法、抗性法或我公司《滴度檢測試劑盒》
【實驗步驟】:以10cm培養(yǎng)皿為例
1)293T細(xì)胞分盤:轉(zhuǎn)染前一天,將已經(jīng)長好的細(xì)胞以合適比例傳代到10cm培養(yǎng)皿中,當(dāng)細(xì)胞長到60%-80%時準(zhǔn)備轉(zhuǎn)染。
2)轉(zhuǎn)染前換液:轉(zhuǎn)染前1~2h將需要轉(zhuǎn)染的細(xì)胞換新鮮的培養(yǎng)基(3%FBS+DMEM培養(yǎng)基),10mL/10cm皿。(注意:293T細(xì)胞貼壁性不是很好,換液時應(yīng)小心滴加盡量避免沖起細(xì)胞。
3)轉(zhuǎn)染:取無菌的15mL離心管,加入1.5ml的基礎(chǔ)培養(yǎng)基,按下列組分配制反應(yīng)體系:
組分 | 用量(10cm細(xì)胞培養(yǎng)皿) |
慢病毒包裝輔助質(zhì)粒Mix(組分1) | 30uL |
慢病毒表達(dá)載體(客戶自備)或CoGFP陽性對照質(zhì)粒(組分6) | 10.5ug |
加入30ul高效轉(zhuǎn)染試劑A液(組分2),混勻。室溫放置15~20min后,均勻滴加到提前換過液的培養(yǎng)皿中,緩慢搖勻培養(yǎng)皿使轉(zhuǎn)染試劑均勻分布后置于CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。
4)換液:轉(zhuǎn)染18~20 h后,小心吸掉細(xì)胞培養(yǎng)液棄于盛有消毒液的廢液杯中(注意:此時培養(yǎng)基中已含有少量的病毒,必須經(jīng)處理后才能丟棄,所用的移液槍頭等必須經(jīng)消毒液浸泡處理后才能丟棄),加10mL收毒液繼續(xù)培養(yǎng)。
5)病毒收集:換液24h后,吸取細(xì)胞上清液于50mL離心管(4℃保存),加10mL收毒液繼續(xù)培養(yǎng)。換液24h后,吸取細(xì)胞上清液于前一次離心管中,4℃,500g離心5min,上清液用0.45μm濾器過濾后轉(zhuǎn)移到新的離心管中,并確定過濾后病毒上清液體積。
6)病毒濃縮:將慢病毒梯度濃縮液(5×)按照1:4的比例添加到過濾后的病毒上清液中(如有20mL病毒上清液,則需要加5mL新慢病毒濃縮液),10,000 g 離心4小時。
7)吸棄上清或緩慢倒掉上清,可看到管壁病毒沉淀,收集病毒懸液,滴度檢測。
8)滴度檢測完成后,將病毒以40~50μL分裝,保存于-80℃,備用。